189 8069 5689

DESeq2中怎么实现两组间差异分析操作

这篇文章将为大家详细讲解有关DESeq2中怎么实现两组间差异分析操作,文章内容质量较高,因此小编分享给大家做个参考,希望大家阅读完这篇文章后对相关知识有一定的了解。

创新互联公司是一家集成都网站建设、网站设计、网站页面设计、网站优化SEO优化为一体的专业网站设计公司,已为成都等多地近百家企业提供网站建设服务。追求良好的浏览体验,以探求精品塑造与理念升华,设计最适合用户的网站页面。 合作只是第一步,服务才是根本,我们始终坚持讲诚信,负责任的原则,为您进行细心、贴心、认真的服务,与众多客户在蓬勃发展的市场环境中,互促共生。

1. 读取数据

读取基因的表达量表格和样本的分组信息两个文件,其中表达量的文件示例如下

gene_id ctrl-1 ctrl-2 ctrl-3 case-1 case-2 case-3
geneA 14  0  11  4  0  12
geneB 125 401 442 175 59 200

每一行为一个基因,每一列代表一个样本。

分组信息的文件示例如下

sample  condition
ctrl-1    control
ctrl-2    control
ctrl-3    control
case-1  case
case-2  case
case-3  case

第一列为样本名,第二列为样本的分组信息。

读取文件的代码如下

# 读取表达量的表格
count <- read.table(
  "gene.counts.tsv",
  header=T,
  sep="\t",
  row.names=1,
  comment.char="",
  check.names=F)
# 预处理,过滤低丰度的数据
countData <- count[apply(count, 1, sum) > 0 , ]
# 读取样本分组信息
colData <- read.table(
  "sample.group.tsv",
  header=T,
  sep="\t",
  row.names=1,
  comment.char="",
  check.names=F)
# 构建DESeq2中的对象
dds <- DESeqDataSetFromMatrix(
   countData = countData,
   colData = colData,
   design = ~ condition)
# 指定哪一组作为control
dds$condition <- relevel(dds$condition, ref = "control")

在读取数据的过程中,有两点需要注意,第一个就是根据表达量对基因进行过滤,通常是过滤低表达量的基因,这一步是可选的,阈值可以自己定义;另外一个就是指定哪一组作为control组,在计算log2FD时 ,需要明确control组,默认会字符串顺序对分组的名字进行排序,排在前面的作为control组,这种默认行为选出的control可能与我们的实验设计不同,所以必须明确指定control组。

2. 归一化

计算每个样本的归一化系数,代码如下

dds <- estimateSizeFactors(dds)


将原始的表达量除以每个样本的归一化系数,就得到了归一化之后的表达量。

3. 估计基因的离散程度

DESeq2假定基因的表达量符合负二项分布,有两个关键参数,总体均值和离散程度α值, 如下图所示

DESeq2中怎么实现两组间差异分析操作

这个α值衡量的是均值和方差之间的关系,表达式如下

DESeq2中怎么实现两组间差异分析操作

通过下列代码估算每个基因的α值

dds <- estimateDispersions(dds)
4. 差异分析

代码如下

dds <- nbinomWaldTest(dds)
res <- results(dds)

为了简化调用,将第二部到第四部封装到了DESeq这个函数中,代码如下

dds <- DESeq(dds)
res <- results(dds)
write.table(
  res,
  "DESeq2.diff.tsv",
  sep="\t",
  quote=F,
  col.names = NA)

在DESeq2差异分析的过程中,已经考虑到了样本之间已有的差异,所以可以发现,最终结果里的log2FD值和我们拿归一化之后的表达量计算出来的不同,  示意如下

> head(results(dds)[, 1:2])
log2 fold change (MLE): condition B vs A
DataFrame with 6 rows and 2 columns
        baseMean log2FoldChange
             
gene1   7.471250     -0.8961954
gene2  18.145279      0.4222174
gene3   2.329461     -2.3216915
gene4 165.634256     -0.1974001
gene5  38.300621      1.3573162
gene6   7.904819      1.8384322

提取归一化之后的表达量,自己计算baseMean和logFoldChange, 示例数据包含了12个样本,其中前6个样本为control, 后6个样本为case , 代码如下

> nor_count <- counts(dds, nor = T)
> res <- data.frame(
   baseMean = apply(nor_count, 1, mean),
   log2FoldChange = apply(nor_count, 1, function(t){ mean(t[7:12]) / mean(t[1:6])})
  )
> head(res)
        baseMean log2FoldChange
gene1   7.471250      0.5380191
gene2  18.145279      1.3404422
gene3   2.329461      0.1991979
gene4 165.634256      0.8719078
gene5  38.300621      2.5621035
gene6   7.904819      3.5365201

对比DESeq2和自己计算的结果,可以发现,baseMeans是一致的,而log2Foldchange 差异很大,甚至连数值的正负都发生了变化。

log2FD 反映的是不同分组间表达量的差异,这个差异由两部分构成,一种是样本间本身的差异,比如生物学重复样本间基因的表达量就有一定程度的差异,另外一部分就是我们真正感兴趣的,由于分组不同或者实验条件不同造成的差异。

关于DESeq2中怎么实现两组间差异分析操作就分享到这里了,希望以上内容可以对大家有一定的帮助,可以学到更多知识。如果觉得文章不错,可以把它分享出去让更多的人看到。


新闻名称:DESeq2中怎么实现两组间差异分析操作
转载来源:http://cdxtjz.cn/article/phoceg.html

其他资讯